凍存管使用不當(dāng)，會有爆管、生物安全威脅及人身傷害等風(fēng)險，請嚴(yán)格參照安全使用須知操作！
一、細(xì)胞凍存流程
1、用預(yù)熱過的 PBS 對細(xì)胞進(jìn)行沖洗，棄去 PBS 后，加入含 EDTA 的胰酶消化液對細(xì)胞進(jìn)行消化（消化液薄薄地覆蓋細(xì)胞表面即可，消化液濃度須根據(jù)不同的細(xì)胞系進(jìn)行調(diào)整）。
2、37℃消化細(xì)胞 3–5 分鐘，不可過度消化。
3、一旦細(xì)胞從底部脫離，即可用含血清培養(yǎng)基終止消化，并用吸管輕輕吹打以重懸細(xì)胞。
4、離心（500 × g, 5 min）細(xì)胞重懸液以沉淀細(xì)胞，棄上清，用含血清培養(yǎng)基對細(xì)胞沉淀進(jìn)行重懸。
5、對細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)（推薦 Neubauer chamber）。
6、離心（500 × g, 5 min）細(xì)胞重懸液，棄上清。用適當(dāng)體積含血清培養(yǎng)基重懸細(xì)胞。
7、凍存管將細(xì)胞重懸液以 1:1 比例與凍存液（60% 培養(yǎng)基，20% FCS，20% DMSO） 進(jìn)行混合后轉(zhuǎn)移至 Cryo.sTM 凍存管中。凍存管中細(xì)胞的濃度應(yīng)為 1–5 ×10^6細(xì)胞/ml。
8、含有細(xì)胞的凍存管須按照1 K/min 的冷卻速率進(jìn)行冷凍。將凍存管插在含異丙醇的凍存盒小室并放置在70℃的冰箱中可以實(shí)現(xiàn)上述要求。如果 凍存液中含有其他類型的樣品時，則需要將 Cryo.s 凍存管在20℃，70℃或者液氮的氣相層進(jìn)行直接凍存。為確保每個樣品的均一凍存效 果，4 ml 和 5 ml 的 Cryo.s凍存管需在20℃過夜凍存后再轉(zhuǎn)移至 70℃或者液氮的氣相層。
9、然后將 Cryo.s 凍存管轉(zhuǎn)移至液氮罐。為避免污染（例如支原體）并考慮到安全預(yù)防規(guī)范的要求，建議將 Cryo.s 凍存管放置在液氮上方的氣相層而非液氮層。
二、細(xì)胞復(fù)蘇流程
1、從液氮罐中取出凍存管后立即將其置于 37℃水浴中進(jìn)行解凍，解凍時間約 1–2min，解凍時需要不停搖動凍存管令其盡快融化。此步解凍過程越快越好。
2、將解凍好的細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移到 15 ml 離心管，并立即添加一定量含血清培養(yǎng)基進(jìn)行混合。
3、離心（500 × g, 5 min）細(xì)胞重懸液，棄去上清。凍存管用適當(dāng)體積的含血清培養(yǎng)基對細(xì)胞沉淀進(jìn)行重懸后分裝到 1 個或多個細(xì)胞培養(yǎng)瓶中。
4、請遵循細(xì)胞接種時的推薦濃度進(jìn)行培養(yǎng)。
5、接下來的 12 個小時細(xì)胞需要靜置培養(yǎng)。
6、細(xì)胞換液可在 24–48h 后進(jìn)行。
