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蛋白質保存方法大全
  • 發布日期:2018-02-28      瀏覽次數:4795
    • 蛋白質的保存是一個比較棘手的問題,分子生物學實驗室的童鞋們或多或少都會碰到。 有沒有遇到過,不同批次純化的蛋白,采用同樣的測試方法,活性卻不太一樣? 有沒有遇到過新純化的蛋白,從冰箱拿出融化后,居然沉淀了? 蛋白質純化后,保存方式都有哪些呢?  

       

      一、謹記蛋白質的保存原則 

      低溫、分裝、濃縮、速凍/速融、添加劑  

       

      二、保存方法你知多少 

      蛋白質的的保存方法的選擇*取決于蛋白質的穩定性以及保存后什么時候再次使用你的蛋白。 

      1、如即提即用的話,可將濃縮蛋白質儲存在單一溶液(如PBS),置于聚丙烯管或干凈的玻璃容器中,放在4°C冰箱保存。 
      優點:蛋白容易獲得,可以快速進行實驗,且同一管樣品可重復取樣,這樣避免了因經常解凍而加速蛋白的降解。  
      缺點:可能會面臨微生物污染,蛋白質失活和氧化,可能對實驗數據的均一性造成影響。要避免這種情況,可以把蛋白質分成小份儲存,并加入蛋白酶抑制劑、抗菌劑和還原劑等。但也要根據自己蛋白的情況,如果你的蛋白是完整的膜蛋白或分泌蛋白,很可能分子內存在二硫鍵,為保證其完整性,應該存儲在氧化環境中。另外,儲存時間超過一個月的蛋白可以考慮扔掉。  

      2、透析到合適的緩沖液中可以凍干,放保存;也可加高濃度的硫酸銨(你的蛋白不沉淀的話),保存。 
      注意:你要注意加入硫酸銨后pH會下降一些,你的緩沖液可不能太接近蛋白的等電點啊,蛋白在等電點附近沉淀很多時候是不可復溶,即使復溶活性也不能保證。  

      3、純化后的蛋白測濃度后,加入50%甘油,確認混勻后分裝,液氮速凍,放入-20度或-80度保存,尤其適用于酶類。 
      優點:在低溫下,蛋白質對微生物污染,蛋白酶降解和氧化反應更有抵抗力,容易保證其活性。用甘油或乙二醇稀釋使蛋白處于溶液中,可以方便取樣。此外,這種方式儲存的蛋白質可以保存長達一年,對于抗體軛合物是一個好的選擇。  
      缺點: 蛋白質在-20°溶液中仍有可能遭受水解、污染和氧化,如果蛋白對還原性環境要求比較高,也需加入抑制劑、還原劑等。而且將樣品存放在50%冷凍保護劑中有時是不可取的,取決于你接下來要做的實驗。  

      4、有些蛋白可以不加甘油,直接液氮速凍幾分鐘,-80度保存。 
      優點:可以長期保存(多年),不需要甘油、疊dan化鈉等化學物質,避免蛋白質降解或微生物污染。缺點:冷凍蛋白質應一次性使用,為了避免反復凍融發生降解。此外,抗體軛合物(特別是堿性磷酸酶復合物)冷凍后可能會失活。  

      5、長期保存蛋白質的另一個方式是凍干(lyophilization)。 
      優點:蛋白質凍干后會呈現蓬松的白色粉末形式,處于*脫水的狀態,可以在冰箱中無限期保存。  
      缺點:對于某些蛋白質,凍干操作有一個潛在問題就是蛋白質不能復溶。凍干/復溶的過程同樣會對蛋白質產生一定的傷害作用。  

       

      三、這些重點你要知道 

      1、保證恒定的pH值,一般PBSzui為常用; 

      2、保證一定的蛋白濃度,如果濃度比較稀的話,可以考慮添加一定量的BSA 

      3、甘油的添加也能在很大程度上提高抗體的穩定性; 

      4. 為了防腐可以添加一定量的疊dan化鈉(辣根過氧化物酶偶聯的二抗一般不能加),如果樣品要用于生物學檢測,避免使用防腐劑。 

      5、無論是冷凍還是儲存在溶液中,將蛋白進行分裝,以避免凍融,降低污染的風險。 

      6、進行蛋白質操作實驗時一定要帶手套,們的皮膚上有一些蛋白酶,這些蛋白酶很可能會降解掉我們的蛋白樣品。皮膚上的其他化學分子也可能會污染蛋白樣品。另外,為了防止細菌的生長,蛋白質保存在滅菌的小管中。 

      7、避免反復凍融或凍干重溶解過程,這樣很可能會降低生物活性。 

      8、避免震蕩,震蕩產生的剪切力有可能會對蛋白質產生破壞作用。震蕩時溶液中會產生氣泡,氧氣的進入會導致蛋白質處在氧化環境中。蛋白質中含有半胱氨酸,其極易被氧化為胱氨酸,這一過程很可能會破環蛋白質的活性。

    魏經理
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